RIZOBACTÉRIAS NO CONTROLE DE Sclerotinia sclerotiorum, E EFEITOS NA PROMOÇÃO DE CRESCIMENTO DE PLANTAS DE SOJA.

Autores

  • Renata Silva Canuto de Pinho Universidade Federal do Pampa - Unipampa
  • Bruna Canabarro Pozzebon Unipampa
  • Ketlen Raisa Rey Rodrigues Universidade Federal do Pampa - Unipampa
  • Renata Bolacel Arns
  • Cezario Almeida Alves
  • Mireli Duarte Bergmann

Palavras-chave:

antagonismo; bactérias benéficas; controle biológico.

Resumo

Sclerotinia sclerotiorum é um dos principais patógenos da cultura da soja, reduzindo o potencial produtivo da cultura e causando perdas de até 37%. Por ser habitante de solo, seu manejo é difícil. Porém, a adoção de métodos alternativos, como o uso de antagonistas, pode auxiliar na redução do inóculo do patógeno. Assim, objetivou-se com esse trabalho, selecionar rizobactérias autóctones de soja e verificar o potencial de antagonismo in vitro frente à Sclerotinia sclerotiorum, bem como o efeito desses isolados na germinação e promoção de crescimento de plantas de soja. Para isso, foram conduzidos testes de inibição e índice de velocidade do crescimento micelial, produção de compostos voláteis e metabólitos rizobacterianos e promoção de crescimento. Com relação ao antagonismo, os isolados I1, U4, M6, U13 e M8, foram os mais eficazes. Para a produção de compsotos voláteis pelo método de placas sobrepostas, os isolados M8, M10, M9, I1, M6 e U4 tiveram as maiores reduções do crescimento micelial do patógeno. Já para a capacidade dos isolados de produzir metabólitos hidrossolúveis em meio de cultura, verificou-se que os isolados I1, M3, M6 e U13 foram os mais eficazes, e para a germinação (IVG) e promoção de crescimento de plantas de soja, oito isolados aumentaram o IVG. Para a altura de plantas (cm), número de folhas, matéria seca da parte aérea e da raiz (g), não houve diferença entre os tratamentos e a Testemunha. Já para o comprimento de raiz (cm), o isolado M8 foi o mais eficaz. De maneira geral, os isolados M8, M10, M9, I1, M6 e U4 são eficazes na inibição do crescimento micelial de Sclerotinia sclerotiorum, produzem compostos orgânicos voláteis, que ajudam no controle do patógeno, bem como agem de maneira eficaz, promovendo incrementos na germinação de sementes e promoção de crescimento de plantas de soja.

Downloads

Não há dados estatísticos.

Biografia do Autor

Renata Silva Canuto de Pinho, Universidade Federal do Pampa - Unipampa

Docente do curso de Agronomia na Universidade Federal do Pampa - Campus Itaqui.

Bruna Canabarro Pozzebon, Unipampa

Docente do curso de Agronomia e Engenharia Cartográfica e de Agrimensura na Universidade Federal do Pampa - Campus Itaqui.

Ketlen Raisa Rey Rodrigues, Universidade Federal do Pampa - Unipampa

Discente do curso de Agronomia na Universidade Federal do Pampa - Campus Itaqui.

Renata Bolacel Arns

Engenheira Agrônoma.

Cezario Almeida Alves

Engenheiro Agrônomo.

Mireli Duarte Bergmann

Discente do curso de Agronomia na Universidade Federal do Pampa - Campus Itaqui.

Referências

ABBAMONDI, G. R.; TOMMONARO, G.; WEYENS, N.; THIJS, S.; SILLEN, W.; GKOREZIS, P.; IODICE, C.; RANGEL, W. M.; NICOLAUS, B.; VANGRONSVELD, J. Plant growth-promoting effects of rhizospheric and endophytic bacteria associated with different tomato cultivars and new tomato hybrids. Chemical and Biological Technologies in Agriculture, v.3, n.1, p.1-10, 2016.
ARAÚJO, A. E. S.; ROSSETTO, C. A. V.; BALDANI, V. L. D.; BALDAN, J. I. Germinação e vigor de sementes de arroz inoculadas com bactérias diazotróficas. Ciência e Agrotecnologia, v.34, n.4, p.932-939, 2010. http://dx.doi.org/10.1590/S1413-70542010000400019.
BEZERRA, G. A.; MACEDO, D. A.; NASCIMENTO, I. O.; SOUSA, T. P.; COSTA, N. B.; SOUSA, L. F. R. A. Uso de Bacillus spp. no controle de fitopatógenos em sementes de soja variedade BRS Valiosa RR. Agrossistemas, v.5, n.1, p.68-73, 2013. http://dx.doi.org/10.18542/ragros.v5i1.1414.
BRAGA JUNIOR, G. M.; CHAGAS JUNIOR, A. F.; CHAGAS, L. F. B.; CARVALHO FILHO, M. R.; MILLER, L. O.; SANTOS, G. R. Controle biológico de fitopatógenos por Bacillus subtilis in vitro. Biota Amazônia, v.7, n.3, p.45-51, 2017. http://dx.doi.org/10.18561/2179-5746/biotaamazonia.v7n3p45-51.
CARDOSO, S. S.; LOPES, M. C.; SILVA JÚNIOR, J. F.; BORGES, B. M. M. N. Eficiência de fungicidas no controle do mofo branco na cultura da soja. Scientia Agraria Paranaensis, v.14, n.1, p.49-52, 2015. http://dx.doi.org/10.1818/sap.v14i1.8869.
CARGNELUTTI FILHO, A., MALUF, J. R. T., & MATZENAUER, R. Coordenadas geográficas na estimativa das temperaturas máxima e média decendiais do ar no Estado do Rio Grande do Sul. Ciência Rural, v.38, n.9, p.2448-2456. 2008. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782008005000005.
CHOUDHARY, D. K.; KASOTIA, A.; JAIN, S.; VAISHNAV, A.; KUMARI, S.; SHARMA, K. P.; VARMA, A. Bacterial-mediated tolerance and resistance to plants under abiotic and biotic stresses. Journal of Plant Growth Regulation, v.35, n.1, p.276–300, 2016. DOI: 10.1007/s00344-015-9521-x.
DICK, C. M.; HUTCHINSON, S. A. Biological control activity of volatile fungal metabolites. Nature, v.211, n.51, p. 868, 1966.
DURÉ, L. M. M.; ROCHA, L. R.; CAPURRO, E. J. D.; CORRÊA, B. O. Seleção e prospecção de rizobactérias para o controle biológico do mofo branco em espécies de Crotalaria spp. Ensaios e Ciência, v.22, n.2, p.90-96, 2018. http://dx.doi.org/10.17921/1415-6938.2018v22n2p90-96.
FERRAZ, H.G.M.; RESENDE, R.S.; MOREIRA, P.C.; SILVEIRA, P.R.; MILAGRES, E.A.; OLIVEIRA, J.R.; RODRIGUES, F.Á. Antagonistic rhizobacteria and jasmonic acid induce resistance against tomato bacterial spot. Bragantia, v.74, p.417-427, 2015. http://dx.doi.org/10.1590/1678-4499.0074.
FERREIRA, D.F. Sisvar: a computer statistical analysis system. Ciência e Agrotecnologia v.35, p.1039-1042, 2011. http://dx.doi.org/10.1590/S1413-70542011000600001.
FILIPPI, M. C. C.; SILVA, G. B.; SILVA-LOBO, V. L.; CÔRTES, M. V C. B.; MORAES, A. J. G.; PRABHU, A. S. Leaf blast (Magnaporthe oryzae) suppression and growth promotion by rhizobacteria on aerobic rice in Brazil. Biological Control, v.58, p.160–166, 2011.
FOUSIA, S.; PAPLOMATAS, E.J.; TJAMOS, S.E. Bacillus subtilis QST 713 confers protection to tomato plants against Pseudomonas syringae pv. tomato and induces plant defence-related genes. Journal of Phytopathology, v.164, p.264–270, 2015. https://doi.org/10.1111/jph.12455.
FURLAN, S. H. Mofo branco. In: LEMES, E.; CASTRO, L.; ASSIS, R. (eds.). Doenças da soja: melhoramento genético e técnicas de manejo. Campinas – SP: Millennium Editora, 2015. p. 53-78.
GIORGIO, A.; STRADIS, A.; CANTORE,P. L.; IACOBELLIS, N. S. Biocide effects of volatile organic compounds produced by potential biocontrol rhizobacteria on Sclerotinia sclerotiorum. Frontiers in Microbiology, v.6, p.1-13, 2015. doi: 10.3389/fmicb.2015.01056.
GLICK, B. R. Plant growth-promoting bacteria: Mechanisms and applications. Scientifica, v.2012, n.1, p.1-15, 2012. http://dx.doi.org/10.6064/2012/963401.
GODOY, C. V.; ALMEIDA, A. M. R.; COSTAMILAN, L. M.; MEYER, M. C.; DIAS, W. P.; SEIXAS, C. D. S.; SOARES, R. M.; HENNING, A.A.; YORINORI, J. T.; FERREIRA, L. P.; SILVA, J. F. V. Doenças da soja. In: AMORIM, L.; REZENDE, J. A. M.; BERGAMIN FILHO, A.; CAMARGO, L. E. A. Manual de Fitopatologia – Volume 2 – Doenças das Plantas Cultivadas (5 Ed.). Ouro Fino: Agronômica Ceres Ltda, 2016. p. 657-678.
GOMES, D.P.; CAMPOS LEITE, R.M.V.B.; MORAES, M.F.H.; KRONKA, A.Z. Sanidade de sementes de girassol provenientes de três municípios do Estado do Maranhão. Revista Caatinga, v.21, n.1, p.55‑63, 2008.
GÖRGEN, C. A.; SILVEIRA NETO, A. N.; CARNEIRO, L. C.; RAGAGNIN, V.; LOBO JUNIOR, M. Controle do mofo branco com palhada e Trichoderma harzianum 1306 em soja. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.44, n.12, p.1583-1590, 2009.
HENNENBERG, L.; GRABICOSKI, E.M.G.; JACCOUD-FILHO, D.S.; PANOBIANCO, M. Incidência de Sclerotinia sclerotiorum em sementes de soja e sensibilidade dos testes de detecção. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v.47, n.6, p.763-768, 2012. http://dx.doi.org/10.1590/S0100-204X2012000600005.
HENNING, A. A. Manejo de doenças da soja (Glycine max L. Merrill). Informativo ABRATES, v.19, p.9-12, 2009.
JI, S. H.; GURURANI, M. A.; CHUN, S. C. Isolation and characterization of plant growth promoting endophytic diazotrophic bacteria from Korean rice cultivars? Microbiological Research, v.169, n.1, p.83– 89, 2014. https://doi.org/10.1016/j.micres.2013.06.003.
KADO, C.I. E HESKETT, M.G. Selective Media for Isolation of Agrobacterium, Corynebacterium, Erwinia, Pseudomonas, and Xanthomonas. Phytopathology, v.60, p.969. 1970.
KANG, S. M.; RADHAKRISHNAN, R.; LEE, I-J. Bacillus amyloliquefaciens subsp. plantarum GR53, a potent biocontrol agent resists Rhizoctonia disease on Chinese cabbage throughhormonal and antioxidants regulation. World Journal of Microbiology and Biotechnology, v.31, n.10, p.1517–1527, 2015. doi: 10.1007/s11274-015-1896-0.
KHAN, A. L.; HALO, B. A.; ELYASSI, A.; SAJID, A.; AL-HOSNI, K.; HUSSAIN, J.; AL-HARRASI, A.; LEE, I-J. Indole acetic acid and ACC deaminase from endophytic bacteria improves the growth of Solanum lycopersicum. Electronic Journal of Biotechnology, v.21, n.1, p.58–64, 2016. https://doi.org/10.1016/j.ejbt.2016.02.001.
LIMA, O. D. R.; OLIVEIRA, L. J. M. G.; SILVA, M. S. B. S; RODRIGUES, A. A. C. Ação antifúngica in vitro de isolados de Bacillus ssp. sobre Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici. Revista Caatinga, v.27, n.4, p.57-64, 2014.
MAIA, F.G.M.; ARMESTO, C.; ZANCAN, W. L. A.; MAIA, J. B.; ABREU, M. S. de. Efeito da temperatura no crescimento micelial, produção e germinação de conídios de Colletotrichum spp. isolados de mangueira com sintomas de antracnose. Bioscience Journal, v.27, n.2, p.205-210. 2011.
MARCUZZO, L. L.; SCHULLER, A. Sobrevivência e viabilidade de escleródios de Sclerotium rolfsii no solo. Summa Phytopathologica, v.40, n.3, p.281-283, 2014. doi: 10.1590/0100-5405/1951. http://dx.doi.org/10.1590/0100-5405/167306.
MENEZES, V.O.; PEDROSO, D. C.; PIVETA, G.; MUNIZ, M. F. B.; MENEZES, N. L.; GARCIA, D. C.; ETHUR, L. Z.; SANTOS, R. F.; TUNES, L. M. Detecção e influência de Fusarium spp. na qualidade fisiológica de sementes de pepino. Ciência Rural, v.41, n.2, p.193-199, 2011. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782011005000006.
MEYER, M. C.; CAMPOS, H. D.; GODOY, C. V.; UTIAMADA, C. M. (eds.). Ensaios cooperativos de controle de mofo branco na cultura da soja: safras 2009 a 2012. Documento 345. Londrina: Embrapa Soja, 2014.
MEYER, M. C.; CAMPOS, H. D.; GODOY, C. V.; UTIAMADA, C. M.; PIMENTA, C. B.; JACCOUD FILHO, D. S.; BORGES, E. P.; JULIATTI, F. C.; NUNES JUNIOR, J.; CARNEIRO, L. C.; SILVA, L. H. C. P. da; SATO, L. N.; GOUSSAIN, M.; MARTINS, M. C.; TORMEN, N. R.; BALARDIN, R. S.; VENANCIO, W. S. Eficiência de fungicidas para controle de mofo branco (Sclerotinia sclerotiorum) em soja, na safra 2016/17: resultados sumarizados dos ensaios cooperativos. Circular Técnica 133. Londrina: Embrapa Soja, 2017.
OOSTENDORP, M.; SIKORA, R. A. Seed treatment with antagonistic rhizobacteria for the suppression of Heterodera schachtii early root infection of sugar beet. Revue de Nématologie, v.1, n.12, p.77-83, 1989.
PINHO, R. S. C.; POZZEBON, B. C.; CALVANO, C. C. A.; VEY, R. T.; HAJAR, A. S.; RODRIGUES, B. M.; RODRIGUES, K. R. R. Bioprospecção de rizobactérias para o controle in vitro de Pyricularia grisea, tratamento de sementes e promoção de crescimento de plântulas de arroz. Biotemas, v.32, n.3, p.23-34. 2019. https://doi.org/10.5007/2175-7925.2019v32n3p23.
POPOVA, A. A.; KOKSHAROVA, O. A.; LIPASOVA, V. A.; ZAITSEVA, J. V.; KATKOVAZHUKOTSKAYA, O. A.; EREMINA, S. I.; MIRONOV, A. S.; CHERNIN, L. S.; KHMEL, I. A. Inhibitory and toxic effects of volatiles emitted by strains of Pseudomonas and Serratia on growth and survival of selected microorganisms, Caenorhabditis elegans, and Drosophila melanogaster. BioMed Research International, v.2014, p.1–11, 2014. http://dx.doi.org/10.1155/2014/125704.
RAMAMOORTHY, V.; VISWANATHAN, R.; RAGUCHANDER, T.; PRACKASAM, V.; SAMIYAPPAN, R. Induction os systemic resistence by plant growth promoting rhizobacteria in crop plants against pests and diseases. Crop Protection, v.20, n.1, p.1-20, 2001. https://doi.org/10.1016/S0261-2194(00)00056-9.
ROMEIRO, R. S. Controle biológico de doenças de plantas – Procedimentos. Viçosa: Editora UFV, 2007.
RYU, E. On the Gram-differentiation of bacteria by the simplest method. Journal of the Japanese Society for Veterinary Science, v.7, p.31, 1938.
SHAHZAD, R.; KHAN, A. L.; BILAL, S.; ASAF, S.; LEE, I-J. Plant growth-promoting endophytic bacteria versus pathogenic infections: an example of Bacillus amyloliquefaciens RWL-1 and Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici in tomato. PeerJ, v.5, n.e3107, p.1-21, 2017. DOI 10.7717/peerj.3107
SHIOMI, H. F.; FERREIRA, M. V. R.; MELO, I. S. Bioprospecção de isolados bacterianos para o controle biológico do mofo branco na soja. Scientific Electronic Archives, v.10, n.2, p.56-63, 2017.
SILVA, F. F.; CASTRO, E. M.; MOREIRA, S. I.; FERREIRA, T. C.; LIMA, A. E.; ALVES, E. Emergência e análise ultraestrutural de plântulas de soja inoculadas com Sclerotinia sclerotiorum sob efeito da aplicação de Trichoderma harzianum. Summa Phytopathologica, v.43, n.1, p 41-45, 2017. http://dx.doi.org/10.1590/0100-5405/2212.
SILVA, J. C. P.; TERRA, W. C.; BARROS, A. F.; CAMPOS, V. P. Compostos orgânicos voláteis no controle de fitonematóides. Lavras: Ed. UFLA, 2019.
SUMIDA, C. H.; CANTERI, M. G.; PEITL, D. C.; TIBOLLA, F.; ORSINI, I. P.; ARAÚJO, F. A.; CHAGAS, D. F.; CALVOS, N. S. Chemical and biological control of Sclerotinia stem rot in the soybean crop. Ciência Rural, v.45, n.5, p.760-766, 2015. http://dx.doi.org/10.1590/0103-8478cr20140198.
TUPICH, F. L. B.; FANTIN, L. H.; SILVA, A. L.; CANTERI, M. G. Impacto do controle do mofo branco com fluazinam na produtividade da soja no Sul do Paraná: metanálise. Summa Phytopathologica, v.43, n.2, p.145-150, 2017. http://dx.doi.org/10.1590/0100-5405/168479.
VENTUROSO, L. R.; BACCHI, L. M. A.; GAVASSONI, W. L.; VENTUROSO, L. A. C.; PONTIM, B. C. A.; REIS, G. F. Inoculação de Sclerotinia sclerotiorum em sementes de oleaginosas: transmissão e seus efeitos sobre a emergência de plantas. Ciência Rural, v.45, n.5, p.788-793, 2015. http://dx.doi.org/10.1590/0103-8478cr20140374.
ZARPELON, T. G. Caracterização de rizobactérias e eficiência de Rizolyptus® no enraizamento e crescimento de eucalipto. 2007. Dissertação (Mestrado em Fitopatologia) – Universidade Federal de Viçosa, Viçosa, 2007.

Publicado

2020-07-28

Como Citar

Silva Canuto de Pinho, R. ., Canabarro Pozzebon, B., Rey Rodrigues, K. R. ., Bolacel Arns, R. ., Almeida Alves, C., & Duarte Bergmann, M. . (2020). RIZOBACTÉRIAS NO CONTROLE DE Sclerotinia sclerotiorum, E EFEITOS NA PROMOÇÃO DE CRESCIMENTO DE PLANTAS DE SOJA . Colloquium Agrariae. ISSN: 1809-8215, 16(4), 110-120. Recuperado de http://revistas.unoeste.br/index.php/ca/article/view/3459

##plugins.generic.recommendByAuthor.heading##